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SiR-微管蛋白試劑盒,高特異性低背景細胞成像

時間:2025/3/26閱讀:61
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SiR-微管蛋白基于硅羅丹明(SiR)熒光團和微管結(jié)合藥物多西他賽。SiR-微管蛋白能夠以高特異性和低背景在活細胞中標(biāo)記微管(1)。SiR-微管蛋白的關(guān)鍵特性包括:i)遠紅光吸收和發(fā)射波長;ii)細胞通透性;iii)熒光生成特性;iv)與超分辨率顯微鏡(STEDSIM)的兼容性。這些特性在一個探針中的d組合使SiR-微管蛋白處于優(yōu)質(zhì)前沿。

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艾美捷SiR-微管蛋白試劑盒#CY-SC002物理特性:

吸收波長(λabs):652 nm

發(fā)射波長(λem):674 nm

652 nm處的摩爾吸光系數(shù)(ε):1.0×10mol?1·cm?1

分子量(MW):1303.6 g/mol

分子式(MF):C73H86N4O16S

 

儲存與操作:

收到后將化合物儲存于-20°C以下。使用無水DMSO配制化合物溶液。使用后將化合物溶液儲存于-20°C以下。在打開前,應(yīng)將小瓶恢復(fù)至室溫。如果儲存得當(dāng),化合物應(yīng)可在數(shù)月內(nèi)保持穩(wěn)定。注意:DMSO溶液應(yīng)特別小心處理,因為DMSO已知會促進有機分子進入組織。請按照所有相關(guān)的當(dāng)?shù)匾?guī)定處理這些試劑。

 

標(biāo)記協(xié)議:

注意:本協(xié)議是使用貼壁于蓋玻片的人類成纖維細胞優(yōu)化的,并已在其他常見細胞系中得到驗證。實驗協(xié)議的建議應(yīng)作為起點,每種細胞類型的優(yōu)標(biāo)記條件應(yīng)通過實驗確定。SiR-微管蛋白基于微管穩(wěn)定藥物多西他賽,因此可以改變活細胞中微管的動態(tài)。盡管間期細胞受探針影響較小,但在培養(yǎng)的HeLa細胞中,超過100 nMSiR-微管蛋白濃度會導(dǎo)致有絲分裂期延長(1)。如果計劃進行長期成像實驗且微管動態(tài)至關(guān)重要,建議將SiR-微管蛋白的濃度保持在100 nM或以下。對于其他用途,建議使用1 µMSiR-微管蛋白進行染色。

1. 配制1 mM儲備液:將SiR-微管蛋白小瓶的內(nèi)容物溶解在50 µL無水DMSO中,制備1 mM儲備液。該溶液應(yīng)儲存于-20°C或更低溫度。不要將溶液分裝成小份,因為它們會更快降解,且該化合物不會因多次凍融循環(huán)而改變。如果儲存得當(dāng),該儲備液應(yīng)可在三個月或更長時間內(nèi)保持穩(wěn)定。如果需要準(zhǔn)確測定儲備液的濃度,可將1 µL 1 mM儲備液稀釋在99 µL含有0.2% SDSPBS中。在室溫下靜置15分鐘后,在652 nm處測量吸光度。使用上述給定的消光系數(shù)計算濃度。

2. 配制染色液:在細胞培養(yǎng)基(例如DMEM + 10%胎牛血清)中將SiR-微管蛋白稀釋至所需濃度,并短暫渦旋。由于染色效率可能因細胞系而異,建議s次嘗試時使用1 µM濃度以快速獲得強染色效果,然后在后續(xù)實驗中降低SiR-微管蛋白濃度,直至獲得最佳染色效果(參見下表中的標(biāo)記濃度和孵育時間)。某些細胞系可能表達高水平的外排泵,因此SiR-微管蛋白染色效果較差。在染色液中加入10 µM維拉帕米(一種廣譜外排泵抑制劑)通常可以顯著改善染色效果。

3. 細胞準(zhǔn)備和染色:按照常規(guī)方法在蓋玻片、玻璃底培養(yǎng)皿或玻璃底多孔板上培養(yǎng)細胞。當(dāng)細胞達到所需密度時,用染色液替換培養(yǎng)基,確保所有細胞都被溶液覆蓋。將細胞置于37°C、含5% CO?的濕潤環(huán)境中孵育,并根據(jù)標(biāo)記時間作為探針濃度的函數(shù)

*標(biāo)記時間是針對人類成纖維細胞確定的,可能會因使用的細胞系而有所不同。

重要提示:SiR-微管蛋白不能染色用甲醛(PFA)和甲醇固定的細胞,因為這些固定方法會改變微管上探針的結(jié)合位點。

 

細胞成像:使用標(biāo)準(zhǔn)Cy5設(shè)置對SiR-微管蛋白進行成像效果佳。標(biāo)記后,活細胞可以立即成像,無需洗滌步驟??蛇x地,用不含探針的新鮮培養(yǎng)基替換一次標(biāo)記液通??梢蕴岣咝旁氡?。如果進行時間序列成像,建議在整個實驗過程中將探針濃度保持在100 nM或以下,以獲得穩(wěn)定的信號并避免探針干擾微管動態(tài)(延長有絲分裂期和降低細胞增殖)。如果在成像前對細胞進行了洗滌,染色效果將持續(xù)數(shù)小時。

 

文獻參考:

1. Fluorogenic probes for live-cell imaging of the cytoskeleton, G. Lukinavi?ius et al., Nature Methods, 11, 731733 (2014)


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