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轉(zhuǎn)基因植物產(chǎn)品數(shù)字PCR檢測方法
轉(zhuǎn)基因植物產(chǎn)品數(shù)字PCR檢測方法
前言
本標(biāo)準(zhǔn)按照GB/T 1.1-2009給出的規(guī)則起草。
本標(biāo)準(zhǔn)由全國生化檢測標(biāo)準(zhǔn)化技術(shù)委員會(huì)(SAC/TC 387)提出并歸口 。
本標(biāo)準(zhǔn)主要起草單位 : 中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院、廣西出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心 、中國農(nóng)業(yè)大學(xué) 、中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院油菜作物研究所。
本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:付偉 、杜智欣 、 王勤 、 王輩煌 、許文濤 、 吳剛 、朱水芳 、 劉曉飛 。
1 范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了轉(zhuǎn)基因成分檢測的數(shù)字PCR方法。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于玉米、大豆、油菜、水稻、馬鈴薯、苜蓿、棉花等轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品的轉(zhuǎn)基因成分?jǐn)?shù)字PCR檢測。
本標(biāo)準(zhǔn)所能達(dá)到的檢測低限為0.1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))。
2 規(guī)范性引用文件
下列文件對(duì)于本文件的應(yīng)用是*的。 凡是注日期的引用文件,僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其版本(包括所有的修改單)適用于本文件。
GB/T 6682 分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法
GB/T 19495.1 轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測 通用要求和定義
GB/T 19495.3 轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測 核酸提取純化方法
GB/T 19495. 7 轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測 抽樣和制樣方法
3 術(shù)語和定義
下列術(shù)語和定義適用于本文件。
3.1
18srRNA基因 18srRNA gene
轉(zhuǎn)錄自18srDNA.是細(xì)胞核糖體的組分之。
3.2
CaMV35s啟動(dòng)子基因 CaMV35s promotor
來自花椰菜花葉病毒(Cauliflower mosaic virus,CaMV)的35s啟動(dòng)子。
3.3
NOS終止子基因 NOS terminitor
來自胭脂堿合成酶基因NOS的終止子。
4 原理
數(shù)字PCR其技術(shù)原理是通過將原始PCR反應(yīng)體系進(jìn)行分割,進(jìn)而對(duì)所有小的反應(yīng)體系進(jìn)行擴(kuò)增并后續(xù)檢測。 通過對(duì)反應(yīng)體系進(jìn)行有限的分割,從而使整個(gè)反應(yīng)體系可以更加耐受核酸抑制因子,并且更加穩(wěn)定、準(zhǔn)確、快速地對(duì)痕量的轉(zhuǎn)基因成分進(jìn)行鑒定。
現(xiàn)階段數(shù)字PCR的實(shí)現(xiàn)形式包括芯片式數(shù)字PCR與做滴式數(shù)字PCR兩種。 其中芯片式數(shù)字PCR通過微流控芯片實(shí)現(xiàn)對(duì)原始反應(yīng)體系的分割,這種分割方式具有穩(wěn)定性好均一性好的優(yōu)點(diǎn),但是這種分割方式的實(shí)驗(yàn)成本相對(duì)較高;微滴式數(shù)字PCR平臺(tái)通過產(chǎn)生微小油包水體系實(shí)現(xiàn)反應(yīng)體系的分割。 這種分割方式具有反應(yīng)速度快.分割成本低的優(yōu)點(diǎn),但是相對(duì)來說,這種分割方法的穩(wěn)定性較差,而且對(duì)于數(shù)據(jù)分析的要求也相對(duì)較高 。 由于數(shù)字PCR的平臺(tái)差異,對(duì)不同數(shù)字PCR平臺(tái)進(jìn)行的數(shù)據(jù)協(xié)同分析也成為了目前數(shù)字PCR檢測方法發(fā)展的關(guān)鍵。
本標(biāo)準(zhǔn)針對(duì)通用篩選元件CaMV35s啟動(dòng)子和NOS終止子設(shè)計(jì)選取特異性引物和探針進(jìn)行數(shù)字PCR擴(kuò)增,并根據(jù)擴(kuò)增結(jié)果來判定CaMV35s啟動(dòng)子和NOS終止子的外源篩選元件成分。 另外,通過芯片式數(shù)字PCR和微滴式數(shù)字PCR的協(xié)同比對(duì),本標(biāo)準(zhǔn)方法可以在兩種平臺(tái)中達(dá)到同樣的檢測目的 。
5 試劑與材料
除非有特殊說明,僅使用分析純試劑和符合GB/T 6682規(guī)定的 水 。
5.1 DNA提取試劑盒
推薦針對(duì)不同的樣品基質(zhì)類型選取不同的基因組提取試劑盒。
5.2 數(shù)字PCR反應(yīng)試劑盒
推薦按照不同的數(shù)字PCR平臺(tái)的說明書選取其推薦的數(shù)字PCR反應(yīng)試劑盒。
5.3 18srRNA基因引物和探針
18s-F:5’-CCTGAGAAACGGCTACCAT'-3’
18s-R:5’-CGTGTCAGGATTGGGTAAT-3’
18s-P:5’-VIC-TGCGCGCCTGCTGCCTTCCT-BHQ1-3’
5.4 CaMV35s啟動(dòng)子基因引物和探針
p35s-F: 5'-ATTGATGTGATATCTCCACTGACGT-3'
p35s-R: 5'-CCTCTCCAAATGAAATGAACTTCCT-3'
p35s-P: 5 '-VIC- CCCACTATCCTTCGCAAGACCCTTCCT-BHQ1-3 '
5.5 NOS終止子基因引物和探針
TNOS-F: 5'-ATCGTTCAAACATTTGGCA-3'
TNOS-R: 5'-ATTGCGGGACTCTAATCATA-3'
TNOS-P,5 '-VIC-CATCGCAAGACCGGCAACAGG-BHQ1l-3'
6 儀器與設(shè)備
6.1分析天平:感量0.1 mg。
6.2生物安全柜
6.3數(shù)字PCR擴(kuò)增儀。
6.4純水儀。
6.5核酸定量儀。
6.6渦旋震蕩儀。
6.7其他相關(guān)儀器和設(shè)備。
6.8離心管。
6.9 不同量程移液器以及配套吸頭如下:
a)量程為 20 µL~200 µI, 10 µL~100 µL 和 2 µL~20 µL 的移液器以及配套的 200 µL 吸頭;
b)量程為 0.5 µL~10 µL 和 0.1µL~2.5 µL 的移液器以及配套的 10µL吸頭。
7 操作步驟
7. 1 抽樣
按照 GB/T 19495.1和GB/T 19495.7 的規(guī)定執(zhí)行。
7.2 制樣
按照 GB/T 19495.1 和 GB/T 191195.7 的規(guī)定執(zhí)行。
7.3 試樣預(yù)處理
按照 GB/T 19495.1 和 GB/T 19195.3 的規(guī)定執(zhí)行。
7.4 DNA模板制備
按照 GB/T 19495.1 和 GB/T 19495.3 的規(guī)定執(zhí)行。
7.5 數(shù)字PCR擴(kuò)增方法
7 .5. 1 試樣數(shù)字 PCR 反應(yīng)
7.5.1.1 內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因數(shù)字 PCR 反應(yīng)
每個(gè)試樣內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因數(shù)字 PCR 反應(yīng)設(shè)置 3 個(gè)平行。 并按照表 1 的組分和終濃度配置數(shù)字 PCR 反應(yīng)體系。 反應(yīng)體系配置完成后,進(jìn)行反應(yīng)體系的分割,其中芯片法數(shù)字 PCR 通過微流控芯片實(shí)現(xiàn)本步驟,微滴法數(shù)字PCR通過形成油包水結(jié)構(gòu)實(shí)現(xiàn)體系的分割。 該步驟按照不同數(shù)字 PCR 平臺(tái)的說明書進(jìn)行操作。 數(shù)字PCR反應(yīng)的有效分割體系數(shù)不得低于理論分割體系數(shù)的60%。
表 1 數(shù)字 PCR 反應(yīng)體系
試劑 | 終濃度 | 體系 |
2×反應(yīng)Mix | l× | 2 .uL |
20 µmol/L, zSSIIb-F/p35s-F/ TNOS-F | 0.45 µmol/L | 0.09 µL |
20 µmol/L, zSSIIb-R/p35s-R/ TNOS-R | 0.45 µmol/L | 0.09 µL |
20µmol/L, zSSIIb-P/p35s-P/ TNOS-P | 0.1 µmol/L | 0.02 µL |
50 ng/ µL DNA模板 | 12.5 ng/µL | 1 µL |
水 | 補(bǔ)齊4 µL | |
總體系 | 4 µL | |
推薦市面上現(xiàn)售的數(shù)字PCR平臺(tái)進(jìn)行實(shí)驗(yàn),并針對(duì)市面上現(xiàn)售的不同數(shù)字PCR平臺(tái),依據(jù)說明書調(diào)整反應(yīng)體系的組分和終體積,并保證表中所列組分的終濃度不變。 |
體系分割完成后,進(jìn)行數(shù)字PCR反應(yīng)。 熒光分析步驟采用VIC單熒光通道,反應(yīng)程序如表2 所示。
表2 數(shù)字PCR反應(yīng)程序
步驟 | 溫度 | 持續(xù)時(shí)間 | 循環(huán)數(shù) |
熱激活 | 50 ℃ | 2 min | 1 |
95 ℃ | 5 n1in | ||
變性 | 95 ℃ | 15 s | 40 |
退火延伸 | 60 ℃ | 1 min | |
注:不同PCR反應(yīng)平臺(tái)可以根據(jù)說明書對(duì)熱啟動(dòng)步驟程序進(jìn)行修改,但是不能對(duì)擴(kuò)增程序進(jìn)行修改。 |
7.5.1.2 外源基因p-35s與T'-NOS基因數(shù)字PCR反應(yīng)
每個(gè)試樣外源基因數(shù)字PCR反應(yīng)設(shè)置3個(gè)平行。 外源基因擴(kuò)增所用反應(yīng)體系與反應(yīng)程序與7.5.1.1相同,擴(kuò)增所使用的引物探針為5.4與5.5所述引物探針。
7.5.2 對(duì)照數(shù)字PCR反應(yīng)
在試樣數(shù)字PCR的同時(shí).應(yīng)設(shè)置陰性對(duì)照與空白對(duì)照。
以與試樣相同種類的非轉(zhuǎn)基因植物基因組DNA作為陰性對(duì)照;以水作為空白對(duì)照。
各對(duì)照PCR反應(yīng)體系中,除模板外,其余組分及PCR反應(yīng)條件與7.5.1相同。
8.結(jié)果分析與表述
8. 1 闊值的設(shè)定
根據(jù)數(shù)字PCR結(jié)果中擴(kuò)增曲線的基錢或者體系中陰性分割體系的終點(diǎn)熒光值設(shè)定熒光的闊值限。 闊值限需要對(duì)陰性和陽性擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)行明顯的區(qū)分。
8.2 對(duì)照組檢測結(jié)果分析
陰性對(duì)照組只有內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因的擴(kuò)增,空白對(duì)照組沒有任何擴(kuò)增現(xiàn)象,這表明數(shù)字PCR反應(yīng)體系正常工作,否則需要進(jìn)行重新檢測 。
8.3 試樣檢測結(jié)果分析和表述
8. 3. 1 內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因得到了明顯的擴(kuò)增,并且外源p-35s或NOS基因的任何一個(gè)出現(xiàn)明顯的擴(kuò)增現(xiàn)象, 陽性擴(kuò)增體系內(nèi)擴(kuò)增曲線形狀良好或者其終點(diǎn)熒光信號(hào)值*過熒光閣值,這表明試樣中檢測出了p-35s 或T-NOS基因,表述為“試樣中檢測出了p-35s或NOS基因成分,檢測結(jié)果為陽性”。
8.3.2 內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因得到了明顯的擴(kuò)增,且其擴(kuò)增曲線形狀良好并*過闊值限,而p-35s或T-NOS基因都沒有得到擴(kuò)增,擴(kuò)增終點(diǎn)熒光信號(hào)值位于闊值限之下,這表明試樣中未檢測出p-35s或T-NOS基因成分,表述為“試樣中未檢測出p-35s或T-NOS基因成分,檢測結(jié)果為陰性” 。
8.3.3 內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因沒有得到擴(kuò)增,擴(kuò)增終點(diǎn)熒光信號(hào)值位于闊值限之下,這表明試樣中未檢測對(duì)應(yīng)植物成分,結(jié)果表述為“試樣未檢出對(duì)應(yīng)植物成分,檢測結(jié)果為陰性’。